实验方法原理：流式细胞仪的工作原理是将待测细胞放入样品管中，在气体的压力下进入充满鞘液的流动室。在鞘液的约束下细胞排成单列由流动室的喷嘴喷出，形成细胞柱。通过对流动液体中排列成单列的细胞进行逐个检测，得到该细胞的光散射和荧光指标，分析出其体积、内部结构、DNA、RNA、蛋白质、抗原等物理及化学特征。

　　细胞内的DNA含量随细胞周期进程发生周期性变化，如G0/G1期的DNA含量为2C，而G2期的DNA含量是4C。利用PI标记的方法，通过流式细胞仪对细胞内DNA的相对含量进行测定，可分析细胞周期各时相的百分比。

　　实验步骤：

　　一、取对数生长期细胞，倒去培养液，胰酶适度消化细胞，用培养液吹打，800 rpm，离心15 min去上清。

　　二、PBS洗2次，加0.5 mLPBS吹匀，务必吹散。

　　三、用5 mL注射器将细胞吸起，用力打入5 mL 70%(预冷)乙醇中，封口膜封口。4℃固定过夜（可长至2周）。

　　四、800 rpm 15 min收集固定细胞，PBS洗2次。

　　五、用0.4 mLPBS重悬细胞并转至Tube中轻轻吹打（防止细胞破碎）。

　　六、加RNase-A约3 μL至终浓度约为50μg/mL ，37℃水浴消化30 min；

　　七、加PI约50 μL至终浓度约为65μg/mL ，在冰浴中避光染色30 min。

　　八、用300目（孔径40~50微米）尼龙网过滤，上机检测。

　　九、样品分析测定及打印。