非原代培养的细胞一般冻存于液氮之中，需要培养时要先从液氮中取出使之复苏。细胞复苏的原则——快速融化：必须将冻存在－196℃液氮中的细胞快速融化至37℃，使细胞外冻存时的冰晶迅速融化，避免冰晶缓慢融化时进入细胞形成再结晶，对细胞造成损害。
具体操作如下：
1、实验前准备：
将水浴锅预热至37℃，并将含10%FBS的培养液置于其中预热。用75％酒精擦拭紫外线照射30min的超净工作台台面。在超净工作台中按次序摆放好消过毒的离心管、吸管、培养瓶等等。
2、取出冻存管及迅速解冻：
根据细胞冻存记录按标签找到所需细胞的编号。从液氮罐中取出细胞盒，取出所需的细胞，同时核对管外的编号。迅速将冻存管投入到已经预热的水浴锅中迅速解冻，并要不断的摇动，使管中的液体迅速融化，约1-2min后冻存管内液体完全溶解，取出用酒精棉球擦拭冻存管的外壁，再拿入超净台内。
3、平衡离心 将细胞悬液吸到离心管中，1000～1500rpm离心3分钟；
4、制备细胞悬液 吸去上清液，加入10 ml培养液，用吸管轻轻吹打均匀，使细胞悬浮；
5、细胞计数 细胞浓度以5×105/ml为宜。
6、培养细胞 将复合细胞计数要求的细胞悬液吸到培养瓶中，将培养瓶放入37℃和5％CO2的培养箱内培养（略微拧松培养瓶盖），换液的时间由细胞情况而定。通常，除少数特别注明对DMSO 敏感的细胞外， 绝大部分细胞株（包括悬浮性细胞）， 在解冻之后， 可直接放入含有10-15ml（5－10倍）新鲜培养基的培养角瓶中， 待隔天再置换新鲜培养基以去除DMSO 即可， 如此可避免大部分解冻后细胞无法生长或贴附的问题。
