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三种细胞免疫荧光染色实验操作步骤

2023-01-18 10:34:17
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  免疫荧光染色的主要原理是利用抗原抗体之间的特异性结合来显示目的蛋白,主要包括蛋白和一抗结合,其次是带有荧光基团的二抗识别并结合一抗,荧光显微镜下即可观察到荧光,下文主要列举了三种细胞免疫荧光染色的实验步骤。

  一、zo-1的免疫荧光,步骤如下:

  1. 细胞在盖片上生长融合到95%-100%时,从孵箱中取出。

  2. 用预温的1×PBS洗3次,每次10分钟。

  3. 4%的甲醛室温固定20-30分钟。

  4. 1×PBS洗3次,每次10分钟。

  5. 0.2%Triton X-100透化2-5分钟。

  6. 1×PBS洗3次,每次10分钟。

  7. 5%BSA室温封闭30分钟。

  8. 加一抗(用1%BSA稀释)放在湿盒里,4度过夜。

  9. 1×PBS洗3次,每次10分钟。

  10. 加二抗(用1%BSA稀释)30分钟,闭光。

  11. 1×PBS洗3次,每次10分钟。

  12. 95%甘油封片。

  注:4%甲醛,0.2%Triton,5%BSA均用1×PBS稀释。

  二、细胞爬片的免疫荧光步骤基本一致:

  1. 取出细胞爬片放到35mm或60mm用过的细胞培养皿里,PBS洗三遍。

  注意:有的时候作的细胞爬片可能比较小,因此夹取的时候要小心,注意 反正面,放在皿里洗比较方便,避免了来回夹取,另外洗的时候加PBS不要太冲,不要细胞冲下来。洗的时候我都是多加PBS,稍晃一下就倒掉,没有等5分钟或10分钟。

  2. 4%冷的多聚甲醛固定20分钟,PBS洗三遍。

  3. 0.2%Triton X-100通透10分钟,PBS洗三遍。

  4. 与二抗相同宿主的血清封闭30分钟,PBS洗三遍。

  5. 一抗4度湿盒内过夜,也可37度2小时,感觉前者效果好,PBS洗三遍。

  6. 二抗室温2小时(避光),或者37度1半小时,PBS洗三遍。

  7. 最好用DAPI染核,然后直接照荧光片。

  8. 蒸馏水洗掉PBS,甘油封片,指甲油封片子的四周,因为甘油不象树脂那样会干,所以不用指甲油封的话会弄的一塌糊涂。

  建议:

  1. 还是染完之后没有封片前直接照一些,因为有的时候可能封片会出现问题,再想照反而没有了,另外不要拖太长时间,荧光会崔灭的。

  2. 荧光的片子一定要避光保存,保存的好的话,过一段时间仍然能照出很好的片子。

  3. 二抗用之前一定离心,不然有的时候有那种沉淀,在片子上就是一个很大的非特异性荧光光点,非常难看。

  三、细胞免疫荧光简单实验步骤如下:

  1. 漂洗血清蛋白H7、2-7、4 37度 PBS 2小时。

  2. -20度甲醇固定20分钟后,自然、干燥 10分钟。

  3. PBS洗净:3min×3。

  4. 1%Triton:25 min~30 min、配成50 ultriton+5 mlpBS。

  5. PBS洗净:2×5 min。

  6. 羊血清封闭:37度,20分钟。

  7. 一抗,4度过夜,一般要大于18小时或者37度,1-2小时。

  8. 4度PBS洗净,3 min×5次。

  9. 二抗37度小于一小时。

  10. 37度 PBS洗净,3×5 min。

  11. 凉干封片(封闭液PH8.5)

  不管采用何种方法,在使用PBS缓冲液漂洗时,都要漂洗干净并且要测下pH值,可以使用PBS多清洗几次,也可以延长PBS清洗时间,如果结果背景较高可以延长漂洗的次数和时长。


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