细胞株的转染是将外源性基因导入细胞内的一种专门技能。随着基因与蛋白功用研讨的深化，转染目前已成为试验室工作中常常涉及的根本办法。转染大致可分为物理介导、化学介导和生物介导三类途径。电穿孔法、显微打针和基因枪归于通过物理办法将基因导入细胞的范例；化学介导办法许多，如经典的磷酸钙共沉淀法、脂质体转染办法、和多种阳离子物质介导的技能；生物介导办法，有较为原始的原生质体转染，和现在比较多见的各种病毒介导的转染技能。

　　细胞株转染时的瞬转和稳转区别是什么？

　　瞬转即瞬时转染，是指将外源质粒通过某种方式导入到细胞内得以表达；

　　稳转即病毒感染，是利用慢病毒将外源插入整合到宿主细胞的基因组，从而达到持久性表达。

　　由此可见，二者的区别即：

　　稳转是基因组整合到宿主细胞基因组，跟随细胞一起增值得以稳定遗传；

　　瞬转是质粒游离在细胞内，一个宿主细胞中可存在多个拷贝数，产生高水平的表达，但通常只持续几天，但不能稳定遗传。

　　细胞株进行转染时转染试剂的准备：

　　1.将400ul去核酸酶水参加管中，震动10秒钟，溶解脂状物。

　　2.震动后将试剂放在－20℃保存，使用前还需震动。

　　3.挑选适宜的混合比例（1：1－1：2/脂质体体积：DNA质量）来转染细胞。在一个转染管中参加适宜体积的无血清培育基。

　　4.将混合液在室温放置10-15分钟。

　　5.吸去培育板中的培育基，用PBS或者无血清培育基清洗一次。

　　6.加混合液，将细胞放回培育箱中培育一个小时。

　　7.到时后，依据细胞品种决议是否移除混合液，之后参加彻底培育基持续培育24-48小时。